菊花挥发油提取工艺

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1材料与仪器

1.1材料

干燥菊花（购于江苏省射阳县洋马菊花基地），为菊属植物杭白菊的干燥花蕾；氯化钠，无水硫酸钠，正己烷均为分析纯。

1.2仪器

挥发油提取器（南京金正玻璃仪器厂）；万能粉碎机；电子分析天平；标准筛（浙江上虞市道墟张兴沙筛厂）；调温试电热套（通州市申通电热器厂）；水浴锅。

2方法与结果

2.1菊花挥发油的提取取一定粉碎度的菊花50g，精密称定，置2000ml圆底烧瓶中，参照《中国药典》Ⅰ部附录XD［1］并作改进，加一定量饱和氯化钠溶液与数粒玻璃珠，振摇混合后，连接挥发油测定器与回流冷凝管，自冷凝管上端加水使充满挥发油测定器的刻度部分，并溢流入烧瓶时为止，再从冷凝管上端加入2ml正己烷，然后将烧瓶置电热套中加热至沸，调温并保持微沸一定时间，停止加热，放置片刻，开启测定器下端活塞将水缓缓放出，收集挥发油，无水硫酸钠脱水，50℃水浴3h挥去正己烷，得到淡黄色挥发油，精密称重，计算提取率。

挥发油提取率（%）=菊花中挥发油含量/菊花重量×100%

2.2不同浸泡液对菊花挥发油得油量的影响称取粉碎菊花50g，加入500ml饱和氯化钠/蒸馏水，在浸泡2h、蒸馏5h下进行提取，实验重复3次，对比两条件下的提取率（见表1）。结果表明，使用饱和氯化钠可以提高提取率，这可能与加NaCl溶液促进油水分离、减少菊花挥发油在水中的溶解度有关［6］，所以在正交实验中采取用饱和氯化钠溶液浸泡菊花。表1不同浸泡液对菊花挥发油得油量的影响（略）

2.3菊花挥发油提取的单因素实验前期预实验研究发现，菊花挥发油得率与其粉碎度、加水量、浸泡时间、蒸馏时间有关系，因此首先通过单因素实验考察提取菊花挥发油的工艺条件。

2.3.1粉碎度对菊花挥发油提取率的影响按照“2.1”项方法，设菊花粉碎度为整棵、剪段、20～40目、40～60目、60～80目、80～100目、100目以上，10倍加水量，2h浸泡时间，5h蒸馏时间下进行水蒸气蒸馏提取，称量并计算提取率。结果见图1。

根据扩散定律：药材粉碎度愈细，浸出效果愈好，成分得率愈高［7］。在图1中发现：菊花挥发油提取率随着粉碎度的增加而增大，但粉碎度达到100目以上时，菊花容易糊化并产生很多泡沫，溶液易暴沸，导致挥发油溢出，以致收集量很少，究其原因为粉碎越细，挥发油含量越低［8］。过细的粉末加水加热时成糊状，容易引起焦化和暴沸现象，故实验选择80～100目的粉碎度作为最佳粉碎度。

2.3.2加水量对菊花挥发油提取率的影响按照“2.1”项方法，设加水量为8，10，12，14，16，18，20倍，粉碎度为粉碎的混合颗粒，浸泡2h，蒸馏5h下进行水蒸气蒸馏，称重并计算提取率。结果见图2。

由图2可知，加水量在14倍时菊花挥发油的提取率为最高，可以认为加水量过多导致溶液易暴沸，影响提取效果，导致挥发油溢出，水量过少又不能充分浸润菊花，故选择14倍为最佳加水量。

2.3.3浸泡时间对菊花挥发油提取率的影响按照“2.1”项方法，设浸泡时间为0,2，4，6，8，10，12h，粉碎度为粉碎的混合颗粒，10倍加水量，蒸馏5h下进行水蒸气蒸馏，称重并计算提取率。结果见图3。

由图3实验结果可知，菊花挥发油提取率随着浸泡时间的延长而增大，在10h达到最大值并保持至24h，浸泡理论认为浸泡可使植物细胞间隙变大，组织细胞充分膨胀，加速细胞内、外液动态交换而有利于挥发油的提取［9］。因此，可以认为菊花浸泡10h组织已经充分膨胀，本着工业生产节约时间原则，浸泡时间选择10h为最佳提取时间。

2.3.4蒸馏时间对菊花挥发油提取率的影响按“2.1”项方法，设蒸馏时间为3.5，5，7，9，10，11，13，15h，粉碎度为粉碎的混合颗粒，10倍加水量，2h浸泡时间下进行水蒸气蒸馏，称重并计算提取率。结果见图4。

观察图4提取过程可以看出，蒸馏13h前挥发油蒸馏出的比较多，后来随着蒸馏的继续，蒸馏出来的挥发油量增加缓慢。这是由于随时间推移，料液中油类组分减少，因此菊花挥发油蒸馏出的量减少。从图4中可以看出，在蒸馏13h达到最大值并保持至15h，故选择13h为最佳蒸馏时间。

2.4提取工艺参数的优化-正交实验

2.4.1正交实验设计根据单因素结果，以挥发油提取率为评定指标，选择菊花粉碎度（A）、浸泡时间(B)、加水量(C)和蒸馏时间(D)为考察因素，每个因素3个水平，选用L9（34）正交表，实验安排见表2。表2菊花挥发油提取工艺因素水平（略）

2.4.2正交实验结果按照表2正交实验设计，如“2.1”项方法进行实验，计算提取率，结果见表3～4。

表3正交实验结果（略）表4方差分析表（略）

由表3中极差直观分析，各因素作用主次顺序为A>D>C>B,表4方差分析结果表明：A，D因素的影响具有非常显著性意义(P<0.01)，B，C因素具有显著性（P<0.05），最优水平为A3B3C3D3，即粉碎度80～100目，蒸馏时间13h，加水量14倍，浸泡时间10h。此结果与单因素实验结果一致。

2.5验证实验为进一步验证正交实验结果的可靠性与重现性，按最佳工艺条件如“2.1”项方法进行3次平行实验，挥发油得量分别为0.279，0.274，0.272g，挥发油平均得量为0.275g，在该条件下挥发油提取率为0.55%。

3讨论

饱和氯化钠和蒸馏水作为浸泡液体的对比实验认为饱和氯化钠对菊花挥发油在水中溶解度有降低作用，但在单因素试验中，考虑节约生产成本，浸泡时未加入饱和氯化钠，仅仅加了蒸馏水，故提取率小于正交试验中的组合提取率。

本次实验所用菊花产自江苏省射阳县洋马菊花基地的杭白菊，在实验中蒸馏出的菊花挥发油油滴散布在水中，有些密度大的成分甚至降至挥发油提取器的刻度下端，导致无法聚集，故实验中采取加入少量正己烷的方法以促进菊花挥发油的聚集。

实验过程中发现粉碎的菊花质轻，漂于水面上不易浸透，因此加入饱和氯化钠浸泡时应注意搅拌，使菊花浸泡时能够充分浸润。

通过正交实验和验证实验表明菊花挥发油的提取工艺是科学的、可行的，影响菊花挥发油提取的主要因素为粉碎度，其次是蒸馏时间、加水量、浸泡时间。最佳提取工艺条件为A3B3C3D3，即粉碎度80～100目，浸泡时间10h，加水量14倍，蒸馏时间13h。在此工艺条件下菊花挥发油提取率为0.55%，与按照《中国药典》方法提取杭白菊挥发油的提取率0.1632%［10］、0.300%［11］相比，提取率有所上升。此最佳工艺条件简单安全，不污染环境，适用于工业生产。

【参考文献】

［1］中华人民共和国卫生部药典委员会．中国药典［S］.北京：化学工业出版社．2005：218.

［2］MotohikoUkiya，ToshihiroAkihisa，KenYasukawa，etal．ConstituentsofCompositePlantstriterpenediolstriolsandtheir3-0-TriterpenefattyacidestersfromedibleChrysanthemumflowerextractandtheiranti-inflammatoryeffects［J］.AgricFood，2001，49：3187.

［3］Alvarez-Castellanos，PinoPBishop，ChrisDPascual-Villalobos，etal．Antifungalactivityoftheessentialoilofflowerheadsofgarlandchrysanthemumagriculturalpathogens(Chrysanthemumcoronarium)against［J］.Phytochemistry，May，2001，57(1)：99.

［4］薛焰，郭立玮，沈静，等．超临界萃取与溶剂法联用提取滁菊有效成分的工艺研究［J］.南京中医药大学学报(自然科学版)，2004，20（2）：102.

［5］ZhengCS，YaoBS，LiM．StudysontheextractionprocessofvolatileoilfromAngelicasinensis［J］.TianjinUnivLightIndus，2001，36：32.

［6］丁艳霞，郭中献．正交实验法优选草果挥发油的提取工艺［J］.河南大学学报(医学版)，2006，25(4)：38，61.

［7］张兆旺．中药药剂学，第1版［M］.北京：中国中医药出版社，2003：971.

［8］陈有根，王汉章，黄敏，等．关于《中国药典》挥发油测定方法的商榷［J］.时珍国医国药，1998，9(4)：344.

［9］郑勇，张志兰．正交实验法优选豆蔻挥发油提取工艺［J］.时珍国医国药，2006，17(4)：596.

［10］姜从良，芦金清，李竣，等.神农香菊中挥发油、总黄酮与杭菊花、贡菊花的比较研究［M］.湖北中医学院学报，2001，3(3)：7.

［11］蒋惠娣，李福高，曾苏．毛细管气相色谱法测定菊花中樟脑、龙脑及β-榄香烯的含量［J］.药物分析杂志，2005，25(5)：508.